独特的荧光染料——mFluor Green 620 琥珀酰亚胺酯
艾美捷mFluor™ Green 620 琥珀酰亚胺酯是一种独特的染料,可被 532 nm 的绿色激光很好地激发以产生红色荧光。mFluor™ Green 620 染料是水溶性的,使用 mFluor™ Green 620 染料制备的蛋白质偶联物是明亮的,斯托克斯位移约为 80 nm。mFluor™ Green 620 琥珀酰亚胺酯和偶联物是出色的绿色激光试剂,适用于流式细胞术研究和荧光成像应用。
艾美捷mFluor™ Green 620 琥珀酰亚胺酯准备解决方案:
除非另有说明,否则所有未使用的储备溶液应分成一次性使用的等分试样,并在制备后储存在 -20°C。避免重复冻融循环。
1. 蛋白质原液(溶液 A)
将 100 µL 反应缓冲液(例如,1 M 碳酸钠溶液或 1 M 磷酸盐缓冲液,pH ~9.0)与 900 µL 目标蛋白溶液(例如抗体,如果可能,蛋白浓度 >2 mg/mL)混合,得到 1 mL 蛋白质标记原液。
注意 蛋白质溶液(溶液 A)的 pH 值应为 8.5 ± 0.5。如果蛋白质溶液的 pH 值低于 8.0,则使用 1 M 碳酸氢钠溶液或 1 M pH 9.0 磷酸盐缓冲液将 pH 值调节到 8.0-9.0 的范围内。
笔记 蛋白质应溶解在 1X 磷酸盐缓冲盐水 (PBS),pH 7.2-7.4。如果蛋白质溶解在 Tris 或甘氨酸缓冲液中,则必须对 1X PBS,pH 7.2-7.4 进行透析,以去除广泛用于蛋白质沉淀的游离胺或铵盐(如硫酸铵和乙酸铵)。
注意 不纯的抗体或用牛血清白蛋白 (BSA) 或明胶稳定的抗体不会被很好地标记。叠氮化钠或硫柳汞的存在也可能干扰偶联反应。叠氮化钠或硫柳汞可以通过透析或离心柱去除以获得最佳标记结果。
笔记 如果蛋白质浓度低于 2 mg/mL,偶联效率会显着降低。为获得最佳标记效率,建议使用 2-10 mg/mL 的最终蛋白质浓度范围。
2. mFluor™ Green 620 SE 储备溶液(溶液 B)
将无水 DMSO 添加到 mFluor™ Green 620 SE 小瓶中,制成 10 mM 储备溶液。通过移液或涡旋充分混合。
注意 在开始偶联之前准备染料储备溶液(溶液 B)。及时使用。染料储备溶液的长期储存可能会降低染料活性。溶液 B 在避光和防潮的情况下可在冰箱中保存两周。避免冻融循环。
艾美捷mFluor™ Green 620 琥珀酰亚胺酯示例实验:
该标记方案是为山羊抗小鼠 IgG 与 mFluor™ Green 620 SE 的偶联物而开发的。用户可能需要进一步优化特定蛋白质。
注意 每种蛋白质都需要不同的染料/蛋白质比例,这也取决于染料的特性。蛋白质的过度标记可能对其结合亲和力产生不利影响,而低染料/蛋白质比率的蛋白质缀合物会降低灵敏度。
运行偶联反应
使用溶液 B(染料)/溶液 A(蛋白质)的 10:1 摩尔比作为起点:将 5 µL 染料储备溶液(溶液 B,假设染料储备溶液为 10 mM)添加到蛋白质小瓶中溶液(95 µL 溶液 A),有效摇动。假设蛋白质浓度为 10 mg/mL 且蛋白质的分子量为 ~200KD,则蛋白质的浓度为 ~0.05 mM。
注意 建议使用 10:1 摩尔比的溶液 B(染料)/溶液 A(蛋白质)。如果太少或太高,分别确定最佳染料/蛋白质比例为 5:1、15:1 和 20:1。
在室温下继续旋转或摇动反应混合物 30-60 分钟。
图:流式细胞术分析用(红色)或不用(绿色)1ug/ml抗人HLA-ABC生物素染色的HL-60细胞,然后用MFFluor™ 绿色620链霉亲和素结合物。
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